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為什么要從化學(xué)發(fā)光轉(zhuǎn)換到熒光檢測
  • 發(fā)布日期:2019-06-21     信息來源:      瀏覽次數(shù):1994
    • Western blot成像方法取決于二抗的標(biāo)記物,常用的方法有基于酶促反應(yīng)的化學(xué)發(fā)光法,基于熒光染料的可見熒光方法和紅外熒光方法,那么我們應(yīng)該如何選擇呢?
      *合適的Western blot實驗方法取決于您期望獲得哪些信息,也就是取決于您的實驗?zāi)康?,小編比較了現(xiàn)有方法的優(yōu)缺點,并分享了自己的心得,希望能夠幫助您選擇到*佳的實驗方法。

      化學(xué)發(fā)光方法
      化學(xué)發(fā)光western blot是相對容易且靈敏度*的檢測方法,靈敏度可以達(dá)到fg級。
      適用于研究:通過電泳可輕松分離的分子量差異顯著的蛋白。

      > 檢測單一蛋白
      > 確定蛋白有無
      > 檢測抗體反應(yīng)
      > 蛋白純度分析
      > 檢測低豐度蛋白
       

      優(yōu)勢劣勢
      靈敏度高半定量
      實驗流程熟悉酶促反應(yīng)
      兼容膠片和數(shù)字成像系統(tǒng)一次只能檢測單一信號
       需要玻璃和重孵育
       膠片沒有過飽和提醒

       
      熒光檢測方法
      熒光染料分為可見熒光染料和紅外熒光染料,從而將熒光western blot檢測分為可見熒光檢測和紅外熒光檢測。目前可見熒光檢測*多三個通道,可以同時檢測三種不同的蛋白,近紅外檢測*多為兩個通道,一定選擇激光光源激發(fā)的哦,更接近近紅外染料的*大發(fā)射波長680nm和800nm,增強(qiáng)二抗信號,提高檢測的靈敏度。
      熒光Western blot使用熒光染料標(biāo)記的二抗進(jìn)行檢測,膜上的靶標(biāo)蛋白濃度與可見熒光信號強(qiáng)度呈線性關(guān)系,實現(xiàn)真實可靠的定量分析。熒光染料發(fā)射光譜不同,因此在一張印跡膜上可實現(xiàn)多重檢測。在無需剝離和重孵育條件下,進(jìn)行上樣量質(zhì)控,可以分析翻譯后修飾蛋白。
      因此當(dāng)您進(jìn)行如下實驗室,選擇熒光檢測方法,妥妥的:

      > 同時檢測多種蛋白
      > 研究翻譯后修飾蛋白
      > 同一印跡膜的上樣質(zhì)控
      > **定量western blot實驗
       

      優(yōu)勢劣勢
      可進(jìn)行多重檢測膜會有自發(fā)熒光
      定量 
      信號持久穩(wěn)定 
      實驗方法不需改變太多 

       
      期刊雜志要求:
      例如nature中“Image Integrity and Standards”中鼓勵在一張印跡膜上進(jìn)行內(nèi)參和目的蛋白的的檢測,同時使用合理的標(biāo)準(zhǔn)化方法:例如:全蛋白歸一化。


       
      化學(xué)發(fā)光屬于酶促反應(yīng),動態(tài)范圍窄,只能實現(xiàn)定性分析,一次只能檢測一個信號,如要檢測多個信號,需要剝離和重孵育,如使用膠片成像,還需要反復(fù)摸索曝光時間,顯影定影設(shè)備和設(shè)備的維護(hù),熒光檢測可同時滿足期刊雜志發(fā)表要求、一次可進(jìn)行多個信號檢測,反應(yīng)條件一致,jingzhun定量,特別近紅外熒光檢測方法,具有低背景,高信噪比,是現(xiàn)在western blot熒光定量的金標(biāo)準(zhǔn)。

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